產品信息：

保存條件：本試劑盒在室溫儲存 12 個月不影響使用效果. 蛋白酶 K 可室溫運輸，建議

-20℃長期保存。

產品介紹：

本試劑盒采用特制的進口 DNA 吸附柱和*的緩沖液系統，特別適合于從口腔

咽拭子中分離純化基因組 DNA。各種來源樣品裂解消化處理后 DNA 在高離序鹽狀態下選擇性吸附于離心柱內硅基質膜（特別配備了 Carrier RNA 可以從體系中輕松捕獲微量核酸），再通過一系列快速的漂洗－離心的步驟，將鹽、細胞代謝物、蛋白等雜質去除，后低鹽的洗脫緩沖液將純凈的基因組DNA 從硅基質膜上洗脫。純化后的 DNA 無雜質和 PCR 抑制劑，可直接適用于 PCR 分析。

產品特點：

配備了 Carrier RNA 用于充分收集特別微量DNA。
提取的 DNA 純度高，質量穩定可靠，可適用于各種常規操作，包括 PCR、酶切、測序、Southern 雜交等。
注意事項：

1. 結合液 CB 或者抑制物去除液 IR 低溫時可能出現析出和沉淀，可以在 37℃水浴幾分鐘幫助重新溶解，恢復澄清透明后冷卻到室溫即可使用。

2. 避免試劑長時間暴露于空氣中發生揮發、氧化、pH 值變化。

3. Carrier RNA

1） Carrier RNA 使用方法：如果起始處理量很少（口腔咽拭子上收集到的細胞很少），我們推薦使用 Carrier RNA，如果預期有較大量 DNA 產量，用戶可以根據需要選擇是否加入 Carrier RNA。使用時每個樣品提取所需結合液 CB 中加入 1μl Carrier RNA 儲存溶液，將結合液 CB 與 Carrier RNA 溶液充分顛倒混勻即可(結合液 CB 容易起泡沫,請勿使用渦旋振蕩混勻)。也可根據樣品數量，在總共需要的結合液CB 中加入總共需要的 Carrier RNA 混勻備用。混合液在室溫 24 小時內穩定。

Carrier RNA 加入過多造成 DNA 洗脫液中 Carrier RNA 濃度過高，下游 PCR 反應可能受干擾，加入過少可能并不能幫助提高 DNA 產量和 PCR 敏感度，因此加入量應該在具體試驗中調整以得到*效果。

自備試劑：無水乙醇操作步驟：

提示：第--次使用前請先在 15ml 漂洗液 WB 中加入 60ml 無水乙醇，充分混勻，

加入后請及時在方框打鉤標記已加入乙醇，以免多次加入!

取樣：取一根醫用消毒棉簽（手不要碰觸脫脂棉部位），伸進口腔，緊靠臉頰內側來回刮拭 20 次（不時旋轉棉棒），需充分接觸口腔粘膜。

注意事項：避免用手觸及棉簽，采集前可先用清水輕輕漱口。為防止樣本被食物或者飲料污染，取樣前 30 min 內應該避免進食或者飲水。

1. 用剪刀將棉簽部分從其桿上剪下，放入 2ml 離心管中，加入 400μl 裂解液 ML。

2. 再加入 20μl 的蛋白酶 K (20mg/ml)溶液，立刻渦旋振蕩充分混勻，56℃放置 30 min，期間每 10 min 渦旋混勻 10 sec。

3. 加入 400μl 結合液 CB，立刻渦旋振蕩充分混勻，70℃放置 10 min（擠壓去除拭子，將盡可能多的裂解液轉移至新的離心管中）。

如果拭子上細胞數量少，導致提取的基因組 DNA 產量過低, 可以在 400μl 結合液 CB中加入 1μl Carrier RNA 儲存溶液。

4. 冷卻后加 200μl 無水乙醇，立刻渦旋振蕩充分混勻。簡短離心以除去管蓋內壁的液滴，收集所有的液體到管底。（如果周圍環境高于 25℃,乙醇需要冰上預冷后再加入）

5. 將上一步混合物中加入一個吸附柱 AC 中（吸附柱放入收集管中），12,000rpm 離心

30-60 sec，倒掉收集管中的廢液。

6. 加入 500μl 抑制物去除液 IR，12,000rpm 離心 30 sec，棄廢液。

7. 加入 500μl 漂洗液 WB（請先檢查是否已加入無水乙醇!），12,000rpm 離心 30 sec，棄掉廢液。

8. 重復操作步驟 7。

9. 將吸附柱 AC 放回空收集管中，12,000rpm 離心 2 min，將吸附柱置于室溫放置數分鐘，以*晾干吸附材料中殘余的漂洗液, 以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。

10. 取出吸附柱AC，放入一個干凈的離心管中，在吸附膜的中間部位加 20-50μl 洗脫緩沖液 EB （洗脫緩沖液事先在 65-70℃水浴中預熱效果更好），室溫放置 1 min，12,000rpm 離心 1 min。將得到的溶液重新加入離心吸附柱中，室溫放置 1 min，12,000rpm 離心 1 min。洗脫體積越大，洗脫效率越高，如果需要DNA 濃度較高，可以適當減少洗脫體積，但是小體積不應少于 20μl，體積過小降低 DNA 洗脫效率，減少 DNA 產量。（注意:DNA 產物應保存在-20℃，以防 DNA 降解）